安徽空间代谢组学鹿明

空间代谢组学成像技术则是通过一些原位电离源，如DESI（解吸电喷雾电离源）、MALDI（基质辅助激光解吸电离源），与质谱相联，通过可视化的成像软件，使得被检测到的质荷比根据含量不同通过不同强度的色彩呈现，进而提供化合物“在哪里？”的信息。无需样品处理实时成像——电喷雾电离技术DESI系列比较大的优势就在于无需样品处理，DESI-MSI作为新型敞开式质谱成像技术，其突出的优势是在大气压条件且敞开式环境下，不需要进行复杂的样品前处理和基质辅助，可更真实反映样品表面分子分布特征。空间代谢组学的力量探究前列腺*。安徽空间代谢组学鹿明

AFADESI-MSI空间代谢组学：1、已落地执行项目100+，其中包括药物在组织中的分布、多种疾病类型和不同处理手段下组织中代谢物的空间成像检测。2、检测组织样本类型20+。高准性的定性算法通过物质表达空间情况、加和离子及同位素峰表达强度相似性、同位素表达空间分布相似性进行初步代谢物注释，并可基于专属物种组织类型数据库或非靶质谱数据基础上在初步注释结果基础上进一步获得更加准确定性的结果。已形成心、肝、脑等多个组织的空间代谢组专属数据库。安徽质谱成像与空间代谢组学空间代谢组技术原理 。

空间代谢组学研究作者对P493-6B细胞淋巴瘤系（BCL）进行了全基因组表达谱、核突变和ChIP分析，发现MYC诱导增加了包括ACLY、ACACA、FASN和SCD1及其相关蛋白在内的脂肪酸（FA）合成基因的mRNA表达，在MYC诱导的肝细胞*（HCC）、急性白血病（T-ALL）和肾细胞*（RCC）的三种体内转基因小鼠模型中也有类似表达。还发现MYC与这些FA合成基因的启动子结合并启动mRNA转录，如甲羟戊酸和胆固醇途径基因的启动子。为了了解MYC和SREBP1之间的相互作用，作者首先，对这两种蛋白进行ChIP和re-ChIP分析，证明MYC和SREBP1都可以发现与FA合成基因启动子中的相同DNA分子结合（图1）。SREBP1的敲低也降低了FA合成基因的表达，但不降低MYC基因的表达。其次，ChIP的MYC与启动子结合，不仅调节FA合成基因的表达，还调节糖酵解和谷氨酰胺分解基因的表达。因此，MYC似乎会依次调节参与脂质合成的基因：首先诱导葡萄糖和谷氨酰胺，然后诱导FA合成相关基因。通过RNA测序（RNA-seq）发现，增加MYC水平会引起糖酵解、谷氨酰胺分解和FA合成。

本研究应用空间代谢组学能够客观地识别食管腺*。EA组磷脂富含长链、多不饱和的PGs。并且，遗传学研究表明，这一机制与脂肪酸从头合成有关。这些结果表明，空间代谢组学可以区分恶性食管中的组织类型。在临床应用包括客观诊断和术中切缘评估具有潜在价值。在获得AFADESI平台原创团队全力支持下，截止2021年9月，鹿明生物已经完成共计近千例样本经验，包括心脏、脑、**、肠道、肝脏、肾脏、皮肤等十几种组织样本空间代谢组学检测及分析。

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作者使用NMR对C原子进行示踪实验，发现MYC驱动葡萄糖和谷氨酰胺的C参与脂肪生成（图3）。采用空间代谢组学检测小鼠模型以及人BCL细胞中的FA，发现MYC**中不饱和脂肪酸（FA（18：1））的丰度增加。进一步发现13C-油酸酯在MYC诱导的BCL细胞未发生代谢，而13C-葡萄糖增加了不饱和FA中的标记碳。当MYC失活时，细胞中3H标记的棕榈酸酯氧化速率明显变高。MYC-ON和MYC-OFF的BCL细胞中的油酸酯均未被氧化。因此，MYC可能在抑制FA氧化的同时上调FA的合成。定量和定位分析，结合生物信息学分析，发展为空间代谢组学方法。海南空间代谢组学与空间转录组

空间代谢组学所解决的科研问题。安徽空间代谢组学鹿明

空间代谢组学：利用基质进行空间成像——MALDI质谱分子成像技术MALDI-MSI分析中非常关键的一点是需要添加基质来吸收激光能量，实现被测物的离子化，主要对脂质类化合物具有较好的分析效果， 空间分辨率比较高可以达到数个微米。其中，MALDI和DESI成像技术目前属于比较完善，使用范围较广的成像技术。这两种技术与质谱相连，使用范围有一定的互补性。二者结合使用，可实现“全谱图分子成像”，相信也有很多老师想要了解这二种成像方式有什么特点呢？安徽空间代谢组学鹿明

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